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生物傳感器

放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-09-19
一、生物傳感器定義與分類

  用固定化生物成分或生物體作為敏感元件的傳感器稱為生物傳感器(biosensor)。生物傳感器并不專指用于生物技術(shù)領(lǐng)域的傳感器,它的應(yīng)用領(lǐng)域還包括環(huán)境監(jiān)測(cè)、醫(yī)療衛(wèi)生和食品檢驗(yàn)等。

  生物傳感器主要有下面三種分類命名方式:

  1.根據(jù)生物傳感器中分子識(shí)別元件即敏感元件可分為五類:酶?jìng)鞲衅鳎?/font>enzymesensor),微生物傳感器(microbial sensor),細(xì)胞傳感器(organall sensor),組織傳感器(tis-sue sensor)和免疫傳感器(immunol sensor)。顯而易見(jiàn),所應(yīng)用的敏感材料依次為酶、微生物個(gè)體、細(xì)胞器、動(dòng)植物組織、抗原和抗體。

  2.根據(jù)生物傳感器的換能器即信號(hào)轉(zhuǎn)換器分類有:生物電極(bioelectrode)傳感器,半導(dǎo)體生物傳感器(semiconduct biosensor),光生物傳感器(optical biosensor),熱生物傳感器(calorimetric biosensor),壓電晶體生物傳感器(piezoelectric biosensor)等,換能器依次為電化學(xué)電極、半導(dǎo)體、光電轉(zhuǎn)換器、熱敏電阻、壓電晶體等。

  3.以被測(cè)目標(biāo)與分子識(shí)別元件的相互作用方式進(jìn)行分類有生物親合型生物傳感器(affinity biosensor)。

 

  三種分類方法之間實(shí)際互相交叉使用。

  二、生物傳感器基本結(jié)構(gòu)和工作原理

  生物傳感器由分子識(shí)別部分(敏感元件)和轉(zhuǎn)換部分(換能器)構(gòu)成,以分子識(shí)別部分去識(shí)別被測(cè)目標(biāo),是可以引起某種物理變化或化學(xué)變化的主要功能元件。分子識(shí)別部分是生物傳感器選擇性測(cè)定的基礎(chǔ)。

  生物體中能夠選擇性地分辯特定物質(zhì)的物質(zhì)有酶、抗體、組織、細(xì)胞等。這些分子識(shí)別功能物質(zhì)通過(guò)識(shí)別過(guò)程可與被測(cè)目標(biāo)結(jié)合成復(fù)合物,如抗體和抗原的結(jié)合,酶與基質(zhì)的結(jié)合。在設(shè)計(jì)生物傳感器時(shí),選擇適合于測(cè)定對(duì)象的識(shí)別功能物質(zhì),是極為重要的前提。要考慮到所產(chǎn)生的復(fù)合物的特性。根據(jù)分子識(shí)別功能物質(zhì)制備的敏感元件所引起的化學(xué)變化或物理變化,去選擇換能器,是研制高質(zhì)量生物傳感器的另一重要環(huán)節(jié)。敏感元件中光、熱、化學(xué)物質(zhì)的生成或消耗等會(huì)產(chǎn)生相應(yīng)的變化量。根據(jù)這些變化量,可以選擇適當(dāng)?shù)膿Q能器。

  (一)BOD生物傳感器

  BOD標(biāo)準(zhǔn)稀釋法是水體有機(jī)污染的常規(guī)監(jiān)測(cè)方法之一。它需要將含有微生物的水樣在20℃培養(yǎng)5d,需要熟練的操作技巧,操作過(guò)程繁瑣,不能及時(shí)反映水質(zhì)情況。為了簡(jiǎn)單、決速地測(cè)定BOD,產(chǎn)生了BOD生物傳感器,以代替標(biāo)準(zhǔn)稀釋法。

  BOD生物傳感器使用的微生物可以是絲孢酵母(Trichosporon cutaneum)。菌體吸附在多孔膜上,室溫下干燥后保存待用。將帶有菌體的多孔膜置于氧電極的Teflon膜上,使菌體處于兩層膜之間。測(cè)量系統(tǒng)包括:帶有夾套的流通池(直徑1.7cm,高0.6cm,體積1.4ml),生物傳感器探頭安裝在流通池內(nèi);蠕動(dòng)泵;自動(dòng)采樣器和記錄儀。

  流通池夾套中水溫恒定于30℃±0.2℃,向流通池中注入氧飽和的磷酸鹽緩沖液(pH7.0,0.1mol/L),流量為1ml/min。電流顯示達(dá)穩(wěn)態(tài)值后,以0.2ml/min的流量向流通池注入樣品溶液,每隔60min注入樣品一次。

  將含有葡萄糖和谷氨酸的標(biāo)準(zhǔn)BOD樣品溶液注入測(cè)量系統(tǒng)時(shí),這些有機(jī)化合物透過(guò)多孔性膜被固定化的微生物所利用。固定化微生物開(kāi)始消耗氧,引起膜附近溶液的溶解氧含量減少。結(jié)果,氧電極輸出電流隨時(shí)間明顯減小,18min內(nèi)達(dá)到某一穩(wěn)態(tài)值,此時(shí)氧分子向膜內(nèi)的擴(kuò)散和細(xì)胞呼吸之間建立了新的耗氧與供氧的動(dòng)力學(xué)平衡。

  穩(wěn)態(tài)電流值的大小取決于樣品溶液的BOD濃度。樣品溶液流過(guò)之后,再將緩沖液通入流通池使傳感器的輸出電流值恢復(fù)到初始水平。生物傳感器的響應(yīng)時(shí)間(達(dá)到穩(wěn)態(tài)電流所需的時(shí)間)視樣品溶液的種類而異。對(duì)含有乙酸的樣品溶液,響應(yīng)時(shí)間為8min;對(duì)含有葡萄糖的樣品溶液,響應(yīng)時(shí)間為18min。因此,實(shí)驗(yàn)中注入樣品的時(shí)間采用20min。

  該生物傳感器的電流差值(初始電流和穩(wěn)態(tài)電流之差)與五天標(biāo)準(zhǔn)稀釋法測(cè)得的BOD濃度之間呈線性關(guān)系。BOD檢測(cè)濃度最低限值為3mg/L。在BOD含量為40mg/L時(shí),10次實(shí)驗(yàn)中電流差值可以重現(xiàn)(相對(duì)誤差在±6%以內(nèi))。

 。ǘy(cè)定氨生物傳感器

  由固定化硝化細(xì)菌、聚四氟乙稀透氣膜和氧電極所構(gòu)成的生物傳感器可用于氨的測(cè)定。從活性污泥中分離到的硝化細(xì)菌,包括亞硝化單胞菌(Nitrosomonas sp.)和硝化桿菌(Ni-trobacter sp.)被吸附固定在多孔膜上(孔徑0.45μm,厚度150μm),把這種載菌膜裝在氧電極端部,再在菌膜上覆蓋一層透氣膜就制成了氨生物傳感器,硝化細(xì)菌以氨為唯一能源消耗氧。

 

  氨的濃度可通過(guò)檢測(cè)氧電極上的固定化微生物的耗氧量來(lái)測(cè)定。測(cè)定在pH9.0,溫度30℃下進(jìn)行。電流降低值(初始電流值與穩(wěn)態(tài)電流值之差)與氨濃度之間呈線性關(guān)系。檢測(cè)最大濃度為42mg/L,最大電流降低值是4.7μA,檢測(cè)下限為0.1mg/L,(重現(xiàn)性為±5%)。對(duì)各種揮發(fā)性物質(zhì)(如醋酸、乙醇、二甲胺、丁胺等)無(wú)響應(yīng),表明傳感器選擇性極好。對(duì)33mg/L氨樣品測(cè)定,傳感器輸出電流在長(zhǎng)達(dá)兩周或者1500次以上的測(cè)定中幾乎不變。對(duì)人尿中氨進(jìn)行測(cè)定,生物傳感器法與氨電極法相關(guān)系數(shù)為0.9,該生物傳感器已用于發(fā)酵廠排出液中氨的測(cè)定。

  (三)亞硝酸鹽生物傳感器

  硝化細(xì)菌利用亞硝酸鹽作為唯一能源,進(jìn)行呼吸作用耗氧,反應(yīng)過(guò)程如下:

 

  使用由固定化硝化細(xì)菌和氧電極構(gòu)成的生物傳感器可以測(cè)定亞硝酸鹽。

  帶有固定化硝化細(xì)菌的多孔性膜切成圓片并小心地貼在氧電極表面的Teflon膜上,然后再蓋上一層透氣膜(0.5μm孔徑)并用橡膠環(huán)固定好即可制成亞硝酸鹽傳感器探頭,它的測(cè)量系統(tǒng)包括:帶夾套的流通池(直徑23mm,高10mm,液體體積1ml),生物傳感器探頭置于其中;蠕動(dòng)泵;放大器和記錄儀。

  通過(guò)水浴使流通池的溫度保持在30℃±1℃。以1.6ml/min的流量將氧飽和的緩沖液(pH2.0)輸入流通池,待電極電流達(dá)到某一穩(wěn)態(tài)值后,以0.4ml/min的流量將樣品溶液送入流通池,歷時(shí)2min

  樣品溶液(亞硝酸鈉溶液)送入流通池后,在pH2.0的條件下亞硝酸離子轉(zhuǎn)變成二氧化氮,然后二氧化氮通過(guò)透氣膜。在硝化細(xì)菌層內(nèi)二氧化氮又轉(zhuǎn)變成亞硝酸離子。亞硝酸離子被硝化細(xì)菌作為唯一的能源而被代謝。通過(guò)氧電極測(cè)出細(xì)菌膜附近的溶液的溶解氧消耗,由氧電極的電流降低值可以間接測(cè)定亞硝酸鹽的濃度。

  該傳感器的電流隨時(shí)間明顯地減小,直到某一穩(wěn)態(tài)值。10min之內(nèi)可得到穩(wěn)態(tài)電流。

  初始電流與穩(wěn)態(tài)電流之差和亞硝酸鹽的濃度(在59mmol/L以下)之間呈線性關(guān)系。亞硝酸鹽的最低檢測(cè)濃度為0.1mmol/L。用0.25mmol/L的亞硝酸鈉溶液測(cè)定時(shí),25次實(shí)驗(yàn)的標(biāo)準(zhǔn)偏差是0.01mmol/L,相對(duì)誤差±4%。

  溶液中含有各種不同的物質(zhì)并不影響到這種生物傳感器的測(cè)量效果。同一濃度樣品,在21d內(nèi)經(jīng)400次以上重復(fù)測(cè)定,傳感器的電流輸出幾乎不變。

 。ㄋ模┮掖忌飩鞲衅

  在乙醇氧化酶、水和氧存在的情況下,乙醇被氧化成乙醛和過(guò)氧化氫的反應(yīng)過(guò)程如下:

 

  由固定化酶膜和過(guò)氧化氫電極可以組合構(gòu)成乙醇生物傳感器。

  350單位的乙醇氧化酶和1ml5%(V/V)的聚乙烯亞胺及3mg牛血清白蛋白溶液混合,并加入0.2ml 15%(V/V)的戊二醛溶液。在5℃存放4h。再將這種酶的混合物包在聚碳酸脂膜和醋酸纖維素膜之間,并在5℃風(fēng)干24h。這些膜再用0.02%(V/V)的戊二醛溶液處理,并用磷酸鹽緩沖液(0.05mol/L,pH 7.0)洗滌之后,獲得該傳感器的探頭。它的測(cè)量系統(tǒng)主要包括:帶夾套的流通池、蠕動(dòng)泵、自動(dòng)進(jìn)樣器、放大器和記錄儀。

  03.0%(V/V)濃度范圍內(nèi)觀測(cè)到的電流增加值和乙醇濃度呈線性關(guān)系。但在3.0%(V/V)濃度以上,是呈非線性的。

 。ㄎ澹┘淄樯飩鞲衅

  甲烷氧化菌同化甲烷時(shí)因呼吸而耗氧,其反應(yīng)式如下:

 

  制備此傳感器所用細(xì)菌是甲基單胞菌(Methylomonas)。

  測(cè)量系統(tǒng)包括兩個(gè)氧電極、兩個(gè)反應(yīng)器、一個(gè)電流放大器、兩臺(tái)真空泵和一個(gè)記錄儀,兩反應(yīng)器容積均為55ml,各含41ml培養(yǎng)液。一個(gè)反應(yīng)器載有細(xì)菌細(xì)胞,另一個(gè)反應(yīng)器中沒(méi)有細(xì)菌細(xì)胞。把兩支氧電極分別安裝在兩個(gè)測(cè)量池中,用玻璃管或聚四氟乙烯管把測(cè)量池與整個(gè)系統(tǒng)連接起來(lái)。一個(gè)真空泵的用途是抽空管中的氣體,另一個(gè)泵的作用是向系統(tǒng)中輸送氣體樣品。整個(gè)系統(tǒng)保持嚴(yán)密性,不漏氣,設(shè)計(jì)線路保持測(cè)量線路和參比線路的對(duì)稱性。反應(yīng)池外用恒溫水浴控制在30℃±0.1℃。

  甲烷傳感器測(cè)量的是兩個(gè)反應(yīng)池中氧電極電流差值,電流值差由含氧量不同而引起。當(dāng)含有甲烷的氣體樣品流過(guò)有細(xì)菌的反應(yīng)池時(shí),甲烷被細(xì)菌同化,引起細(xì)菌呼吸性增加,這樣該反應(yīng)池中氧電極電流減少至最低穩(wěn)定狀態(tài)。而另一支氧電極所在的反應(yīng)池中不含有細(xì)菌,氧含量及電流值均不減少,所以兩個(gè)電極電流之間的最大差值與氣體樣品中甲烷含量有關(guān)。

  此傳感器系統(tǒng)在甲烷濃度為06.6mmol/L范圍內(nèi)與電流差值有良好的線性關(guān)系,電流差值變化范圍是03.5μA,可檢測(cè)的最低濃度是5μmol/L,測(cè)定0.66mmol/L的樣品(25個(gè))時(shí),電流差值的重現(xiàn)性在5%以內(nèi),標(biāo)準(zhǔn)偏差是9.40nA。測(cè)定甲烷的響應(yīng)時(shí)間在60sec內(nèi)恢復(fù)到最初的平衡值,因此,測(cè)定一個(gè)樣品的總時(shí)間是2min。

 

 

 

  生物化學(xué)反應(yīng)過(guò)程產(chǎn)生的信息是多元化的,微電子學(xué)和現(xiàn)代傳感技術(shù)的成果已為檢測(cè)這些信息提供了豐富的手段。

  三、生物傳感器應(yīng)用于環(huán)境監(jiān)測(cè)實(shí)例

 

 

 
 
 
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