一、從小鼠、豚鼠或家兔腹腔中分離巨噬細胞

1．取6周左右的小鼠（或600克左右的豚鼠，或3公斤左右的家兔），剃去腹部的毛并消毒。腹腔注射1ml（豚鼠20ml，家兔200ml）無菌的液體石蠟或巰基乙酸肉湯或4％淀粉肉湯。3～4天以后收集腹腔細胞。
2．如要收集腹腔靜置巨噬細胞，不注射刺激物，直接從這一步開始。放血處死動物，以減少腹腔中的紅細胞。消毒腹部，沿腹中線注入3～4ml（豚鼠20～40ml，家兔50～70ml）冰中預冷的無菌PBS-H（含10U/ml肝素和10％小牛血清的PBS）。輕輕按摩腹部5分鐘。
3．以下均無菌操作。剪開腹壁，用吸管吸出滲出液，再用同樣容量的預冷PBS-H沖洗腹腔2～3次。合并滲出液于離心管中，4℃離心250×g 10分鐘，去上清液。
4．用預冷的RPMI-1640培養(yǎng)液洗滌細胞3次，每次4℃離心250×g 10分鐘，去上清液。用預冷的適量RPMI-1640培養(yǎng)液懸浮細胞，臺盼藍染色計數(shù)細胞并決定細胞活力。

二、家兔肺泡巨噬細胞的分離和純化
1．取2～3公斤重的家兔，耳緣靜脈注射10ml空氣處死動物或注射2ml（含130mg）戊巴比妥麻醉動物。仰臥固定，消毒胸部，剪開胸壁。以下過程注意無菌操作。小心從環(huán)狀軟骨下方剪下氣管，分離心臟和血管，取出肺，剪去脂肪和結締組織。用無菌紗布小心擦凈肺表面，稱重。
2．分離肺泡巨噬細胞：用夾子夾住氣管，使肺懸空。向氣管中注射40ml無菌的冷生理鹽水，讓生理鹽水進入全部肺泡。用鑷子提起氣管，從夾子下面剪斷氣管，將肺中的液體倒入離心管中。再用同樣方法，用40ml無菌冷生理鹽水沖洗肺泡，合并浸出液，置4℃。
3．分離肺組織中的巨噬細胞：取出肺泡巨噬細胞后，剪去氣管，將肺組織放在有冷RPMI-1640培養(yǎng)液的平皿中。平皿置冰上，用吸滿冷RPMI-1640培養(yǎng)液的20ml注射器接23號針頭，一邊灌注一邊用針頭梳離肺組織，直到肺組織與支氣管樹全部分離。使肺組織通過00目的鋼絲網(wǎng)，分離單個細胞。
4．以下過程均在4℃中進行。分別處理肺泡巨噬細胞和肺組織中的巨噬細胞：離心200×g 10分鐘，去上清液。輕彈試管，懸浮細胞，加入10ml低滲液（20mmol/L Tris, 0.75%氯化銨，pH7.4），37℃處理3～5分鐘，溶解紅細胞。紅細胞通常分別占肺泡巨噬細胞和組織巨噬細胞的1％和10％。也可以不用低滲處理，直接在淋巴細胞分離液上分離巨噬細胞。
5．離心200×g 10分鐘，去上清液。用RPMI-1640培養(yǎng)液洗滌細胞一次。將細胞懸液加在淋巴細胞分離液（比重1.077）上，離心400×g 20分鐘，收集交界面的巨噬細胞。棄去沉淀的死細胞和紅細胞。
6．用RPMI-1640培養(yǎng)液洗滌巨噬細胞2次。臺盼藍染色檢測細胞活力和細胞數(shù)，將細胞配成所需濃度。此時巨噬細胞活力可達90％以上，巨噬細胞占全部細胞的90％以上。

三、從小鼠脾臟、胸腺和骨髓中分離巨噬細胞
1．用外科方法無菌摘取小鼠脾臟和胸腺，置于盛有預冷RPMI-1640培養(yǎng)液（含1％小牛血清）的平皿中，剪去結締組織和脂肪。用無菌注射器芯將脾臟或胸腺擠壓通過200目的鋼絲網(wǎng)，獲得單個細胞。
2．離心200×g 10分鐘，去上清液。用含1％小牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)液將細胞配成約1×108～5×108/ml。