實驗研究中，經(jīng)常要采集實驗動物的血液進行常規(guī)質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。

一、大鼠、小鼠的采血方法
(一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數(shù)、血紅蛋白測定、制作血涂片等可與此法。動物麻醉后，將尾尖剪去約5mm，從尾部向尾尖部按摩，血即從斷端流出。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。如不麻醉，采血量較小。采血結束后，消毒、止血。用此法每只鼠可采血10余次。小鼠可每次采血約0.1ml，大鼠約0.4ml。
(二)眼眶后靜脈叢采血：穿刺采用一根特制的長7～10cm硬的玻璃取血管,其一端內(nèi)徑為1 ～1.5mm，另一端逐漸擴大，細端長約1cm即可，將取血管浸入1％肝素溶液，干燥后使用。采血時，左手拇指及食指抓住鼠兩耳之間的皮膚使鼠固定，并輕輕壓迫頸部兩側，阻礙靜脈回流，使眼球充分外突，提示眼眶后靜脈叢沖血。右手持取血管，將其尖端插入內(nèi)眼角與眼球之間，輕輕向眼底方向刺入，當感到有阻力時即停止刺入，旋轉取血管以切開靜脈叢，血液即流入取血管中。采血結束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。用本法在短期內(nèi)可重復采血。小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠一次可采血0.5～1.0ml。
(三)頸(股)靜脈或頸(股)動脈采血：將鼠麻醉，剪去一側頸部外側被毛，作頸靜脈或頸動脈分離手術,用注射器即可抽出所需血量。大鼠多采用股靜脈或股動脈,方法是：大鼠經(jīng)麻醉后，剪開腹股溝處皮膚，即可看到股靜脈，把此靜脈剪斷或用注射器采血即可，股動脈較深需剝離出，再采血。
(四)摘眼球采血：此法常用于鼠類大量采血。采血時,用左手固定動物,壓迫眼球，盡量使眼球突出，右手用鑷子或止血鉗迅速摘除眼球，眼眶內(nèi)很快流出血液。
(五)斷頭采血：用剪子迅速剪掉動物頭部，立即將動物頸朝下，提起動物，血液可流入已準備好的容器中。

二、豚鼠采血方法
(一)耳緣切口采血：先將豚鼠耳消毒,用刀片沿血管方向割破耳緣,切口約長0.5cm,在切口邊緣涂上20％的檸檬酸鈉溶液，防治血凝，則血可自切口處流出。此法采血每次可采0.5ml。
(二)背中足靜脈采血：固定豚鼠，將其右或左后肢膝關節(jié)伸直，腳背消毒，找出足靜脈，左手拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手將注射針刺入靜脈，拔針后立即出血。
(三)心臟采血：用手指觸摸，選擇心跳最明顯的部位，把注射針刺入心臟，血液即流入針管。心臟采血時所用的針頭應細長些，以免發(fā)生采血后穿刺孔出血。

三、兔的采血方法
(一)耳緣靜脈采血：將兔固定,拔去耳緣靜脈局部的被毛，消毒，用手指輕彈兔耳,使靜脈擴張，用針頭刺耳緣靜脈末端,或用刀片沿血管方向割破一小切口,血液即流出。本法為兔最常用的采血方法，可多次重復使用。
(二)耳中央動脈采血：在兔耳中央有一條較粗的、顏色較鮮紅的中央動脈。用左手固定兔耳，右手持注射器，在中央動脈的末端，沿著與動脈平行的向心方向刺入動脈，即可見血液進入針管。由于兔耳中央動脈容易痙攣，故抽血前必須讓兔耳充分充血，采血時動作要迅速。采血所用針頭不要太細，一般用6號針頭，針刺部位從中央動脈末端開始，不要在近耳根部采血。
(三)頸靜脈采血：方法同小鼠、大鼠的頸靜脈采血。
(四)心臟采血：使家兔仰臥，穿刺部位在第三肋間胸骨左緣3mm處， 針頭刺入心臟后，持針手可感覺到兔心臟有節(jié)律的跳動。此時如還抽不到血，可以前后進退調(diào)節(jié)針頭的位置，注意切不可使針頭在胸腔內(nèi)左右擺動，以防弄傷兔的心、肺。

四、狗的采血方法
(一)后肢外側小隱靜脈采血：后肢外側小隱靜脈位于后肢脛部下三分之一的外側淺表皮下，由前側方向后行走。采血時，將動物固定，局部剪毛、消毒，采血者左手緊握剪毛區(qū)上部或扎緊止血帶，使下部靜脈充血，右手用連有6號或7號針頭的注射器刺入靜脈，左手放松，已適當速度抽血即可。
(二)前肢背側皮下頭靜脈采血：前肢背側皮下頭靜脈位于前腳爪的上方背側的正前位。采血方法同上。
(三)頸靜脈采血：前兩種方法需技術熟練,且不適于連續(xù)采血。大量或連續(xù)采血時,可采用頸靜脈采血，方法同小鼠、大鼠的頸靜脈采血方法。
(四)股動脈采血：本法為采取動脈血最常用的方法。操作簡便，稍加訓練的狗，在清醒狀態(tài)下將狗臥位固定于狗解剖臺上。伸展后肢向外伸直，暴露腹股溝三角動脈搏動的部位，剪毛、消毒，左手中指、食指探模股動脈跳動部位，并固定好血管，右手取連有5號半針頭的注射器，針頭由動脈跳動處直接刺入血管，若刺入動脈一般可見鮮紅血液流入注射器，有時還需微微轉動一下針頭或上下移動一下針頭，方見鮮紅血液流入。有時可能刺入靜脈，必須重抽。抽血畢，迅速拔出針頭，用干藥棉壓迫止血2-3分鐘。