一、原理
細(xì)胞在培養(yǎng)瓶長(zhǎng)成致密單層后,已基本上飽和,為使細(xì)胞能繼續(xù)生長(zhǎng),同時(shí)也將細(xì)胞數(shù)量擴(kuò)大,就必須進(jìn)行傳代(再培養(yǎng))。
傳代培養(yǎng)也是一種將細(xì)胞種保存下去的方法。同時(shí)也是利用培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)的必經(jīng)過程。懸浮型細(xì)胞直接分瓶就可以,而貼壁細(xì)胞需經(jīng)消化后才能分瓶。
二、材料和試劑
1、細(xì)胞:貼壁細(xì)胞株
2、試劑:0.25%胰酶、1640培養(yǎng)基(含10%小牛血清)
3、儀器和器材:倒置顯微鏡,培養(yǎng)箱、培養(yǎng)瓶、吸管、廢液缸等
三、操作步驟
1、將長(zhǎng)滿細(xì)胞的培養(yǎng)瓶中原來(lái)的培養(yǎng)液棄去。
2、加入0.5—1ml 0.25%胰酶溶液,使瓶底細(xì)胞都浸入溶液中。
3、瓶口塞好橡皮塞,放在倒置鏡下觀察細(xì)胞。隨著時(shí)間的推移,原貼壁的細(xì)胞逐漸趨于圓形,在還未漂起時(shí)將胰酶棄去,加入10ml培養(yǎng)液終止消化。
觀察消化也可以用肉眼,當(dāng)見到瓶底發(fā)白并出現(xiàn)細(xì)針孔空隙時(shí)終止消化。一般室溫消化時(shí)間約為1—3分鐘。
4、用吸管將貼壁的細(xì)胞吹打成懸液,分到另外兩到三瓶中,實(shí)踐培養(yǎng)液塞好橡皮塞,置37℃下繼續(xù)培養(yǎng)。第二天觀察貼壁生長(zhǎng)情況。
附:消化液配制方法:
稱取0.25克胰酶蛋白酶(活力為1:250),加入100ml無(wú)Ca2 、Mg2 的Hank’s液溶解,濾器過濾除菌,4℃保存,用前可在37℃下回溫。
胰酶溶液中也可加入EDTA,使最終濃度達(dá)0.02%。